Определение механизмов клеточного противодействия ВИЧ-1, обусловленного сенсингом вирусной кДНК в клеточной цитоплазмеНИР

Determination of the HIV-1 restriction mechanisms caused by viral cDNA sensing in the cellular cytoplasm

Источник финансирования НИР

грант РНФ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 28 мая 2025 г.-31 декабря 2025 г. Определение механизмов клеточного противодействия ВИЧ-1, обусловленного сенсингом вирусной кДНК в клеточной цитоплазме
Результаты этапа: аботы, выполненные в отчетный период проекта, и, как следствие, достигнутые результаты в рамках проведенных работ можно условно разделить на две группы. В рамках первой группы исследований основной целью являлось определение эффекта замен ключевых аминокислотных остатков в капсидном белке ВИЧ-1 на способность псевдовирусов на основе генома ВИЧ-1, содержащих такие мутантные формы капсидного белка ВИЧ-1, индуцировать внутриклеточный путь распознавания цитозольной ДНК – cGAS-STING-путь, а также установления влияния этих замен на эффективность сборки псевдовирусных частиц и протекание ранних этапов репликации ВИЧ-1. Долгое время считалось, что разборка капсида ВИЧ-1 происходит практически сразу после его проникновения в цитоплазму инфицированной клетки, а синтезируемая в ходе обратной транскрипции кДНК ВИЧ-1 оказывается незащищенной от цитоплазматических факторов. В 2011 году было показано, что недавно открытый цитозольный ДНК сенсор – cGAS, хотя и распознает кДНК ВИЧ-1 в цитоплазме и приводит к запуску защитных механизмов, включающих продукцию интерферона бета и интерферон-стимулируемых генов, однако, практически сразу в ряде работ было показано, что вирус эффективно ускользает от иммунного распознавания. Благодаря этому, а также за счет улучшения существующих и созданию новых методик детекции капсидов ВИЧ-1 в клетках в последние 10 лет исходная парадигма о немедленной распаковке капсида ВИЧ-1 после попадания в цитоплазму была пересмотрена. Согласно современным данным, разборка капсида происходит уже после его проникновения в ядро, куда он транспортируется практически в интактном виде. Таким образом, именно капсид ВИЧ-1 является тем защитным барьером, который препятствует распознаванию кДНК ВИЧ-1 цитозольным ДНК сенсором cGAS. В связи с этим важно понимать, какие аминокислотные остатки в составе капсидного белка стабилизируют его, поскольку эта инфорамация может быть использована в будущем для создания новых типов анти-ВИЧ терапии. В рамках первого года проекта мы проанализировали с использованием различных биоинформатических алгоритмов структуру капсида ВИЧ-1 и после нескольких раундов ручного отсева отобрали 20 наиболее интересных для последующего изучения аминокислотных остатков капсидного белка, которые потенциально должны влиять на стабильность капсида и, как следствие, на доступность кДНК для cGAS. Финальный список отобранных остатков выглядит следующим образом: K30, E35, H62, K70, D71, K140, M144, Y145, L151, R162, V165, D166, F169, R173, T178, E180, L189, Q192, T200, T216. На основе плазмидного вектора pNL4.3-E-R_mCherry мы получили серию плазмид для сборки псевдовирусов на основе генома ВИЧ-1, содержащих мутантные формы капсидного белка. Всего было получено 20 векторов. На их основе в клетках HEK293T нами были получены VSV-G-псевдотипированные репликативно-некомпетентные векторы с мутантными формами капсидного белка, а в качестве контроля, параллельно был получен псевдовирус с природным вариантом p24. Для полученных препаратов псевдовирусов нами была оценена эффективность их сборки двумя методами: иммуноферментное определение количества p24 и оценка включения геномной РНК. Мы установили, что все исследованные мутации за исключением K70A, T178A, E180A, T200A и T216A приводят к существенному снижению эффективности сборки псевдовирусов, что говорит о капсид-дестабилизирующем действии исследуемых мутаций. Также мы показали на клетках THP-1, а затем и на HEK293T, что эти мутации (за исключением вышеуказанных + Т189А) также негативно влияют и на трансдуцирующую способность псевдовирусов. С использованием клеток THP-1 мы также охарактеризовали способность псевдовирусов кативировать cGAS-STING-путь. Мутации K30A, E35A, D71A, K140A, M144A, Y145A, L151A и V165A статистически-достоверно усиливали распознавание цитозольной кДНК в трансдуцированных клетках. Мы также оценили эффективность синтеза кДНК такими псевдовирусами и эффективность ее проникновения в ядра клеток. Способность активировать cGAS-STING-путь была сопряжена с увеличением продукции кДНК, а также нарушением ее транспорта в ядро, а значит повышает время нахождения кДНК в в цитозоле, повышает шансы на преждевременную распаковку капсида и последующее распознавание цитозольным сенсором cGAS. После получения антител к p24 для этих мутантов будет охарактеризована кинетика разборки/деградации капсидов в трансдуцированных клетках, что позволит комплексно охарактеризовать эффект исследуемых мутаций. Также в рамках этого направления было исследовано влияние размера генома лентивирусного вектора на способность активировать cGAS-STING-путь. В ходе предварительного этапа работы мы показали, что стандартные лентивирусные векторы на основе генома ВИЧ-1, которые используются многими лабораториями для доставки трансгена в целевые клетки, а группами, изучающими ВИЧ-1 – в качестве модели ранних этапов репликации ВИЧ-1, такие как LeGo-G/BSD, pUCHR-inLuc и другие, являются очень плохими индукторами cGAS-STING-пути. Стоит отметить, что в таких векторах большая часть вирусного генома заменена на репортерную экспрессионную кассету, что приводит к существенному сокращению размера генома вектора до 5-6 т.о. Одновременно с этим вектор с практически полноразмерным геномом pNL4.3-E-R_mCherry (около 10 т.о.) в 5-6 раз лучше стимулирует cGAS-STING-путь. Мы предположили, что именно размер генома, а не конкретные последовательности в вирусном геноме, может являться причиной таких различий. Известно, что в ходе обратной транскрипции из РНК генома синтезируется более жесткая двуцепочечная ДНК, что приводит к повышению напряжения внутри капсида и стимулирует его разборку, в том числе и преждевременную. Для проверки этого предположения нами был получен вектор LeG-G/BSD с увеличенным до 10 т.о. размером генома. С его помощью мы подтвердили наше предположение, т.е. установили, что для успешной активации cGAS-STING-пути важен именно размер генома лентивирусного вектора, а не сама последовательность. Второе направление представляет собой подготовительные этапы для работ второго и третьего этапа выполнения проекта. В рамках них нам предстоит идентифицировать клеточные белки, которые способны влиять на распознавание цитозольной кДНК ВИЧ-1 и активацию cGAS-STING-пути. В рамках этой цели мы предлагаем в качестве одного из методов анализа – CRISPR-Cas-скрининг таких факторов. Для его проведения нам было необходимо сначала разработать репортерную клеточную линию, в которой будет происходить экспрессия eGFP по cGAS-STING-зависимому пути в ответ на лентивирусную трансдукция клеток. Для получения клеточной линии была использована плазмида pCCL/IFNB1-d2eGFP-3’UTR (addgene #180232) для наработки лентивирусного вектора, обеспечивающего стабильную интеграцию экспрессионной кассеты. В составе данной кассеты репортерный ген – дестабилизированный eGFP (d2eGFP), находится под контролем промотора интерферона бета и окружен регуляторными 5’- и 3'-нетранслируемыми областями гена интерферона бета. С ее помощью нами была получена тотальная популяция клеток с интегрированной в случайные места генома экспрессионной кассетой, проведено ее моноклонирование и проверка работы репортера. В результате проведенных нами тестов нам удалось идентифицировать один из моноклонов, который подходил под следующие критерии: отсутствие базальной экспрессии eGFP до индукции, и активация репортера в 95 % клеток после трансдукции клеток псевдовирусом. На базе этих клеток нами были получены клетки, экспрессирующие оптимизированный вариант Cas9, а затем уже на их основе библиотека нокаутов по всем белок-кодирующим генам человека. Именно эта библиотека нокаутов и будет использована для поиска клеточных факторов, влияющих на активацию cGAS-STING-пути.
2 1 января 2026 г.-31 декабря 2026 г. Определение механизмов клеточного противодействия ВИЧ-1, обусловленного сенсингом вирусной кДНК в клеточной цитоплазме
Результаты этапа: -
3 1 января 2027 г.-31 декабря 2027 г. Определение механизмов клеточного противодействия ВИЧ-1, обусловленного сенсингом вирусной кДНК в клеточной цитоплазме
Результаты этапа: -

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".