Разработка новых мутантных форм родопсинов для оптогенетикиНИР

Development of new mutant forms of rhodopsins for optogenetics

Источник финансирования НИР

грант РНФ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 8 августа 2023 г.-30 июня 2024 г. Разработка новых мутантных форм родопсинов для оптогенетики
Результаты этапа: I. Исследование механизма прямых и обратных фотохимических реакций в выбранных бактериальных и животных родопсинах Проведен анализ литературы с целью выявление родопсинов, обладающих самой высокой скоростью фотоизомеризации и, таким образом, представляющих интерес для применения в оптогенетике. Установлено, что микробный родопсин KR2 из бактерии Krokinobacter eikastus и бычий зрительный родопсин (ЗР) обладают наибольшей скоростью фотоизомеризации. Проведен анализ литературы с целью выбора репрезентативных кристаллических структур реагентов и интермедиатов исследуемых родопсинов для проведения исследований. Для построения полных атомистических моделей реагентов родопсина KR2, зрительного родопсина (ЗР) и бактериородопсина (БР) были выбраны структуры с идентификаторами PDB ID 6YC3, 1L9H и 1M0L, соответственно, а для построения моделей интермедиатов - структуры с идентификаторами PDB ID 6TK5, 2G87 и 1M0K, соответственно. С помощью молекулярно-динамического моделирования и комбинированного метода квантовой механики и молекулярной механики (КМ/ММ) получены уравновешанные КМ/ММ оптимизированные полные атомистические модели реагентов и интермедиатов исследуемых родопсинов и проведен анализ структуры их активного центра. Установлено, что реагенты родопсина KR2 и зрительного родопсина обладают близким структурным мотивом активного центра, который характеризуется наличием сильной водородной связи между первичным противоионом и протонированным основанием Шиффа и близостью заряженного остатка к основанию Шиффа. За счет наличия прямой водородной связи полиеновая цепь ретиналя в родопсинах KR2 и ЗР претерпевает скручивание вокруг определенной двойной связи, именной той, которая в дальнейшем претерпевает реакцию фотоизомеризации. В случае родопсина KR2 это связь С13=С14, а в случае ЗР – связь С11=С12. В случае БР между противоионом и протонированным основанием Шиффа ретиналя находится молекулы воды, и прямой водородной связи между противоионом и протонированным основанием Шиффа не образуется, а полиеновая цепь ретиналя скручена вокруг связи С13=С14 слабее, чем полиеновая цепь родопсина KR2. Полиеновая цепь КМ/ММ оптимизированных структур первичных интермедиатов скручена сильнее, чем в реагентах. Это объясняется тем, что первичные интермедиаты находятся в нерелаксированном состоянии, которое возникает сразу после поглощения фотона и фотоизомеризации. С помощью метода XMCQDPT2/SA-CASSCF (12,12)/(aug)-cc-pVDZ в сочетании с методом EFP для КМ/ММ оптимизированных структур реагентов и интермедиатов рассматриваемых родопсинов были рассчитаны энергии вертикальных переходов и однофотонные электронно-колебательные спектры и проведен анализ колебательной структуры полос электронно-колебательных спектров. Из анализа колебательной структуры спектров реагентов установлено, что в родопсине KR2 при переходе S0-S1 наиболее активной является нормальная мода валентного колебания вдоль двойной связи C13 = C14, а также HOOP колебательная мода атома водорода при данной двойной связи. В зрительном родопсине высокую интенсивность приобретает валентное колебание вдоль связи C11 = C12 , а также HOOP колебательная мода атомов водорода при данной двойной связи. То есть при помещении молекулы РПШО из газовой фазы в белковое окружение родопсина KR2 и зрительного родопсина в ретинале возникают высокочастотное валентное и HOOP колебания при определенной двойной связи. Эти два колебания вместе способствуют фотоизомеризации при данной двойной связи, при этом это именно та двойная связь, которая действительно в дальнейшем подвергается реакции фотоизомеризации. В бактериородопсине, так же, как и в случае родопсина KR2 при переходе S0-S1 наиболее активной является нормальная мода валентного колебания вдоль двойной связи C13 = C14. Но важным отличием от KR2 является то, что в БР HOOP колебание при связи C13 = C14 обладает намного меньшей интенсивностью, чем аналогичное колебание в KR2. Это связано с тем, что ретиналь в БР скручен вокруг связи C13 = C14 слабее, чем в KR2, что вызывает ослабление интенсивности HOOP колебаний при данной связи. Снижение интенсивности HOOP колебаний может являться причиной более низкой скорости фотоизомеризации РПШО в БР (~500 фс) по сравнению с KR2 (~200 фс). Таким образом, установлено, что белковое окружение родопсинов особым образом влияет на структуру собственной хромофорной группы, которая претерпевает скручивание полиеновой цепи, в результате чего при поглощении фотона становятся активными только определенные колебательные моды хромофора, которые способствуют сверхбыстрому протеканию реакции фотоизомеризации вокруг определенной двойной связи. Показано, что образование прямой водородной связи между противоионом и основанием Шиффа ускоряет в несколько раз скорость реакции фотоизомеризации и является важным элементом структуры активного центра в родопсинах, обладающих наивысшей скоростью фотоизомеризации. Анализ колебательной структуры электронно-колебательных спектров для первичных интермедиатов выявил значительные отличия от колебательной структуры спектров реагентов. Так, интенсивность HOOP колебаний в интермедиатах значительно выше, чем в реагентах, так как ретиналь сразу после изомеризации не успевает до конца релаксировать и находится в более скрученной конформации по сравнению с исходным состоянием, что способствует возрастанию интенсивности HOOP колебаний. В интермедиате KKR2 , также как и в исходном реагенте интенсивными являются только одна высокочастотная колебательная мода вдоль связи C13 = C14 и также одна колебательная HOOP мода, которые вместе способствуют обратной реакции фотоизомеризации вокруг связи C13 = C14 . В интермедиате Бато становятся активны сразу две колебательные моды вдоль связей C13 = C14 и C11 = C12 , а также две колебательные HOOP моды при данных двойных связях, что делает обратную реакцию фотоизомеризации зрительного родопсина менее селективной и обладающей меньшим квантовым выходом по сравнению с обратной реакцией родопсина KR2. В интермедиате KBR также, как и интермедиате KKR2 активна только одна высокочастотная колебательная мода вдоль связи C13 = C14 . В KBR возбуждается HOOP колебательная мода при связи C13 = C14. При этом также становится активной HOOP колебательная мода при связи C11 = C12, но ее интенсивность в несколько раз меньше таковой при связи C13 = C14 . Поэтому можно утверждать, что возбуждающиеся колебательные моды в интермедиате KBR , как и в KKR2 способствуют обратной реакции фотоизомеризации по связи C13 = C14 . Полученные данные согласуется с результатами эксперимента по измерению квантовых выходов обратных реакций для бактериородопсина и зрительного родопсина, в которых квантовый выход для БР в пять раз выше квантового выхода для ЗР. Таким образом, установлено, что обратные реакции в родопсинах I типа протекают с более высокой степенью селективности, чем обратные реакции в родопсинах II типа, что может быть связано с собственными фотофизическими свойствами изомеров ретиналя в активных центрах интермедиатов. Так, в интермедиатах микробных родопсинов содержится 13-цис изомер, который в газовой фазе изомеризуется на порядок быстрее, чем полностью-транс изомер в газовой фазе, находящийся в интермедиатах животных родопсинов. II. Исследование влияния белкового окружения на величину сечения двухфотонного поглощения ретиналь -содержащих белков первого и второго типа В данном разделе работы было исследовано влияние белкового окружения выбранных родопсинов на сечение их двухфотонного поглощения, свойства, определяющего эффективность использования белков в оптогенетических исследованиях в режиме двухфотонного поглощения. Данный раздел работы является логическим продолжением предыдущего этапа, на котором были исследованы свойства KR2, ЗР и БР при однофотонном поглощении. С помощью комбинированного метода КМ/ММ в варианте XMCQDPT2/CASSCF(12,12)/(aug)-cc-pVDZ // EFP были рассчитаны компоненты средних дипольных моментов в начальном (S0) и конечном (S1) состояниях, а также компоненты дипольных моментов переходов между различными электронными состояниями для родопсинов KR2, ЗР и БР. Для изучения влияния белкового окружения были рассчитаны компоненты средних дипольных моментов в начальном (S0) и конечном (S1) состояниях, а также компоненты дипольных моментов переходов между различными электронными состояниями для следующих модельных систем: для изолированных хромофоров в газовой фазе в геометрии из родопсинов KR2, ЗР и БР, для изолированных квантовых частей родопсинов KR2, ЗР и БР. Установлено, что наличие противоионов в ближайшем белковом окружении РПШО оказывает сильное влияние на его фотофизические свойства. Так, энергия вертикального перехода значительно сдвигается в синюю сторону при переходе от изолированного хромофора к белковому окружению. Важно отметить, что наибольший синий сдвиг, который варьируется в диапазоне 0.5–0.8 эВ, во всех трех случаях наблюдается при учете только ближайшего окружения хромофора, входящего в КМ подсистему. Учет вклада электростатического поля всего остального белкового окружения, входящего в ММ подсистему, напротив приводит к небольшому красному сдвигу по сравнению с энергией вертикального перехода в КМ подсистеме. Белок КR2 обладает наименьшим синим сдвигом, что обусловлено наличием только одного противоиона, стабилизирующего заряд на РПШО в его ближайшем белковом окружении. Характер перехода S0 → S1 не меняется при переходе от изолированного хромофора к белковому окружению и характеризуется значительной степенью переноса заряда, о чем можно судить по изменению средних дипольных моментов начального и конечного. Изменения энергии вертикального перехода S0 → S1 и разности средних дипольных моментов происходят симбатно при переходе от изолированного хромофора (в геометрии из белкового окружения) к КМ части и далее ко всему белку: синий сдвиг сопровождается уменьшением величины Δμ10, и, наоборот, красный сдвиг ее увеличением. Это обусловлено стабилизацией основного состояния РПШО в белковом окружении из-за взаимодействия с первичным противоионом и характером перераспределения электронной плотности при возбуждении. Вычислены значения сечений двухфотонного поглощения при фотовозбуждении S0 → S1 в микробных и животных родопсинах, которые рассчитаны в рамках N-уровневых моделей при возрастании количества состояний N, которые входят в суммирование. Установлено, что аналогично результатам, полученным для флуоресцентных белков, начальное и конечное состояния при фотовозбуждении S0 → S1 дают наибольший вклад в сечение двухфотонного поглощения микробных и животных родопсинов, а значения сечений хорошо описываются при помощи двухуровневой модели TLM, которая включает только два канала, учитывающих постоянные дипольные моменты состояний S1 и S0, а именно 0 → 0 → 1 и 0 → 1 → 1. Обнаружено, что двухуровневая модель TLM может быть использована для данных белков, так как однофотонный переход S0 → S1 является ярким и сопровождается большим перераспределением электронной плотности. В рамках классического двухфотонного поглощения сечение зависит от разности средних дипольных моментов этих состояний, и установлена четкая корреляция между увеличением сечения двухфотонного поглощения и увеличением средних дипольных моментов при переходерис. В результате проведенных исследований установлено, что сильная зависимость величин сечения двухфотонного поглощения от локальной структуры активного центра родопсинов I и II типов связана с электростатическим полем белка и его влиянием на поляризацию электронной плотности хромофора РПШО в основном и электронно-возбужденном состояниях. Наибольшее значение наблюдается у микробного родопсина КR2 (610 ГМ), при этом величины сечений у родопсинов первого типа могут варьироваться в широких пределах в зависимости от структурного мотива активного центра белка и влияния ближайшего белкового окружения, в первую очередь, противоионов, стабилизирующих положительный заряд на хромофоре. Введение точечных мутаций в родопсины первого и второго типа, приводящих к сдвигу максимумов поглощения в более длинноволновую область, будут приводить к увеличению сечения двухфотонного поглощения. Влияние электростатического поля белка в родопсинах первого и второго типов противоположно влиянию белкового окружения на нелинейные фотофизические свойства хромофорной группы флуоресцентных белков из-за разной относительной поляризуемости возбужденного и основного электронных состояний хромофоров этих белков вдоль направления переноса заряда при их возбуждении. III. Исследование влияния мутаций на фотофизические свойства родопсинов Проведен обзор литературы с целью поиска закономерностей, влияющих на сдвиг спектра поглощения родопсинов. Установлено, что наличие полярных аминокислотных остатков вблизи β-иононового кольца приводит к смещению спектра поглощения родопсинов в более длинноволновую область. Установлено, что наличие отрицательно заряженных и полярных аминокислотных остатков вблизи протонированного основания Шиффа ретиналя приводит к смещению спектра поглощения родопсинов в более коротковолновую область. На основе обзора литературы выбраны мутации P219T и S254A для проверки их влияния на спектр поглощения родопсина KR2 на уровне теории XMCQDPT2/CASSCF(12,12)/(aug)-cc-pVDZ // EFP. С помощью молекулярно-динамического моделирования и комбинированного метода квантовой механики и молекулярной механики (КМ/ММ) получена уравновешанная КМ/ММ оптимизированная полная атомистическая модель мутантной формы родопсина KR2 с двумя мутациями P219T и S254A. С помощью метода XMCQDPT2/SA-CASSCF (12,12)/(aug)-cc-pVDZ в сочетании с методом EFP для КМ/ММ оптимизированной структуры мутантной формы родопсина KR2 была рассчитана энергия вертикального перехода и однофотонный электронно-колебательный спектр. Установлено, что введенные мутации смещают спектр поглощения в красную область по сравнению с родопсином KR2 дикого типа.
2 1 июля 2024 г.-30 июня 2025 г. Разработка новых мутантных форм родопсинов для оптогенетики
Результаты этапа: I Исследование сечения двухфотонного поглощения мутантной формы родопсина KR2 Для детального изучения влияния белкового окружения и конформаций мутированных остатков Thr219 и Ser254 на фотофизические свойства KR2 P219T/S254A были проведены расширенные исследования мутантной формы KR2. Они включали продолжительное молекулярно-динамическое моделирование для анализа подвижности этих остатков и влияния их различных ориентаций относительно хромофорной группы, протонированного основания Шиффа ретиналя (РПШО), на одно- и двухфотонное поглощение. Молекулярно-динамическое (МД) моделирование пентамера мутантной формы KR2 P219T/S254A проводилось в липидный бислой из пальмитоил-2-олеоил-sn-глицеро-3-фосфохолина (POPC) в водном окружении в течение 25.5 нс. По результатам МД были выбраны две структуры мономеров с различными конформациями Thr219 для дальнейших расчетов комбинированным методом квантовой механики /молекулярной механики (КМ/ММ). Аналогично готовилась модель KR2 дикого типа. КМ/ММ оптимизация геометрии основного состояния выполнялась для мономера KR2 дикого типа и двух конформеров мутанта. Оптимизация проводилась на уровне PBE0/(aug)-cc-pVDZ. Энергии вертикального возбуждения и дипольные моменты рассчитывались методом XMCQDPT2[7]/SA(7)-CASSCF(12,12)/(aug)-cc-pVDZ с учетом окружения через потенциалы эффективных фрагментов (EFP) (электростатическое внедрение). Активное пространство SA-CASSCF (12 электронов, 12 орбиталей) включало все валентные π- и π∗-орбитали. Свойства двухфотонного поглощения (ДФП), включая классическое (CTPA) и запутанное (ETPA), анализировались на основе формализма суммы по состояниям. В рамках этого анализа также была оценена применимость упрощенной двухуровневой модели (TLM) для описания данных процессов. МД моделирование мутантной формы KR2 (KR2 P219T/S254A) выявило две основные конформации мутированного остатка Thr219. В конформере 1 OH-группа Thr219 обращена к β-иононовому кольцу РПШО, а в конформере 2 – к CO-группе Thr216, образуя водородную связь (H-связь). Эти конформации находятся в динамическом равновесии. Также важно отметить конформацию противоиона РПШО, Asp116. В этом исследовании мы работаем с такой конформацией противоиона Asp116 в активном центре KR2, которая имеет прямую H-связь с РПШО и которая описана в литературе. Энергия вертикального возбуждения (VEE) для KR2 P219T/S254A смещена в красную область на 0.11-0.13 эВ по сравнению с диким типом, что хорошо согласуется с экспериментом (0.16 эВ) и подтверждает правильность нашего вычислительного подхода. В случае низколежащего перехода S0→S1 каналы возбуждения PDP, связанные только с начальным и конечным состояниями, вносят наибольший вклад в рассчитанные сечения CTPA как в KR2, так и в его двойном мутанте (92-95%). Быстрая численная сходимость формализма суммы по состояниям предоставляет прямое доказательство применимости двухуровневой модели для расчета сечений TPA в KR2. Это объясняется большим дипольным моментом перехода и значительным перераспределением электронной плотности при переходе S0→S1 в РПШО. Двойной мутант демонстрирует небольшое увеличение рассчитанного сечения CTPA. Это объясняется увеличением дипольного момента перехода, в то время как разность постоянных дипольных моментов, вызванная изменениями локального электрического поля белка, наоборот, уменьшается. Рассчитанные сечения CTPA для KR2 (~370 ГМ) и его двойного мутанта KR2 P219T/S254A (~380 ГМ) согласуются с доступными экспериментальными данными для канального родопсина ChR2 (260 ± 20 ГМ) и для бактериородопсина (290 ± 50 ГМ). Ранее было показано, что для KR2 ожидается более высокое сечение CTPA по сравнению со значениями для зрительного родопсина и бактериородопсина, что согласуется с полученными текущими результатами. Сечения CTPA родопсинов значительно выше большинства значений, сообщенных для флуоресцентных белков (20–100 ГМ), из-за гораздо более выраженного перераспределения электронной плотности при переходе S0→S1. Действительно, рассчитанная разность постоянных дипольных моментов начального и конечного состояний составляет 11.4 D в KR2 по сравнению с ранее сообщенным значением для улучшенного зеленого флуоресцентного белка (EGFP) (4.4 D, σc∥ = 44 ГМ). Также были рассчитаны сечения CTPA для изолированных квантовых частей из мутантных конформеров и для изолированных РПШО из мутантных конформеров. Для изолированных квантовых частей величина сечения CTPA составила ~349 ГМ. Для изолированных РПШО величина сечения CTPA составила ~1420 ГМ. Эти расчеты свидетельствуют о том, что и ближайшее белковое окружение в КМ части, и более удаленное белковое окружение в ММ оказывают значимое влияние на величину сечения CTPA. Абсолютные значения CTPA зависят от уровня теории. В KR2 сечение CTPA, рассчитанное на уровне теории XMCQDPT2[7]/SA(3)-CASSCF/(aug)-cc-pVDZ//EFP, оказывается в 1.5 раза выше, чем полученное с использованием SA(7). Рассчитанные вероятности ETPA δe как функция времени запутанности Te хорошо описываются TLM. Максимум ETPA обусловлен неклассическим вкладом δ+, который на порядок больше классического δc. Преобладающий механизм PDP для перехода S0→S1 объясняет неклассический вклад в вероятность ETPA, который напрямую связан со свойствами поглощающей молекулы. Неклассический вклад зависит от векторной суммы постоянных дипольных моментов, тогда как классический член определяется их разностью. Направления этих векторов схожи в обоих белках. В KR2 постоянные дипольные моменты в основном и первом возбужденном состояниях, μ00 и μ11, почти параллельны, их сумма велика, что приводит к усилению вероятности TPA на порядок за счет квантовой запутанности, сравнимому с EGFP, где эффект еще больше из-за меньшего δc. Проекции суммы и разности постоянных дипольных моментов на дипольный момент перехода, μ10, параллельны в KR2, и ожидается, что изменения локального электрического поля внутри белка будут влиять на них схожим образом. Это действительно наблюдается при введении двойной мутации в белок. И разность, и сумма постоянных дипольных моментов уменьшаются; однако вероятность CTPA немного растет из-за роста μ10, а ETPA падает из-за большего влияния уменьшения суммы постоянных дипольных моментов. Красное смещение у мутанта вызвано стабилизацией S1 и дестабилизацией S0. Однако индуцированное электрическое поле не совпадает с направлением дипольного момента перехода и не может быть эффективно использовано для дальнейшего усиления вероятности CTPA и ETPA в KR2 P219T/S254A. Путем задания индуцированному полю направления, совпадающему с направлением μ10, посредством введения положительно и отрицательно заряженных остатков вблизи хромофора становится возможным осуществлять дизайн смещенных в красную область родопсинов KR2 с усиленными TPA. Эта ситуация отличается от EGFP, где смещенные в синюю область гомологи ярче, и где поле белка по-другому влияет на вклады в TPA. II. Исследование фотофизических свойств родопсина ESR Для моделирования была использовалана структура 4HYJ [7]. Были созданы две атомистические модели ESR, отражающие разное состояние протонирования His57: однократно протонированный по ϵ-азоту (щелочной pH) и дважды протонированный (кислый pH). Белок помещался в липидный слой фосфатидилхолина и сольватировался водой. Конформационную подвижность исследовали методом метадинамики. В качестве коллективных переменных (CV) для первого сечения выбрали расстояние Asp85(O2)-РПШО(H) (CV1) и торсионный угол С12-С13=С14-С15 ретиналя (CV2). Для второго – расстояние Asp85(O1)-His57(ϵ-N-H) (CV3) и CV1. Моделирование по 20 нс проводилось для обеих моделей His57. Геометрию полученных конформеров оптимизировали комбинированным методом КМ/ММ (PBE0/(aug)-cc-pVDZ // AMBER). Энергии вертикальных переходов рассчитывали методом XMCQDPT2/SA-CASSCF(12,12)/(aug)-cc-pVDZ // EFP. Спектры Франка-Кондона также рассчитывали на уровне теории XMCQDPT2/SA-CASSCF(12,12)/(aug)-cc-pVDZ // EFP. Интерпретацию результатов проводили с учетом экспериментальных данных наших коллег, которые экспериментально установили наличие двух компонент в кинетике распада возбужденного состояния ESR: реакционноспособной (образование 13-цис РПШО) и нереакционноспособной. Времена жизни обеих компонент возрастают с понижением pH (с 9.5 до 5.3). При этом характеристическое время жизни реакционноспособного состояния составляет 0.51±0.02, 0.62±0.04 и 0.88±0.07 пс при рН 9.5, 7.4 и 5.3 соответственно. Нереакционноспособное состояние характеризуется временами жизни 5.1±0.7, 4.7±0.4 и 8.9±1.2 пс при рН 9.5, 7.4 и 5.3, соответственно. . Это может объясняться гетерогенностью активного центра ESR. Для проверки этой гипотезы рассмотрели две формы ESR: с депротонированным δ-азотом His57 и с протонированным δ-азотом His57, при депротонированном Asp85. Депротонированный His57 (щелочной pH): Первое сечение поверхности энергии Гиббса, в координатах CV2 и CV1, выявило два близких по энергии и структуре минимума: DM1 (CV1~1.74Å, CV2~187°) и DM2 (CV1~1.75Å, CV2~173°, энергия +0.6 ккал/моль относительно DM1). Они соответствуют семейству конформеров DCF1, характеризующемуся прямой водородной (H-связью) Asp85-РПШО и значительно скрученным торсионным углом ретиналя (после КМ/ММ оптимизации CV1~1.51Å, торсионный угол ~191°). Второе сечение, в координатах CV1 и CV3, показало самый глубокий минимум DM4 (CV1~4.70Å, CV3~1.79Å). Ему соответствует конформер DCF2, где прямая H-связь Asp85-РПШО отсутствует (после КМ/ММ CV1~3.8Å, РПШО связан H-связью с водой), а торсионный угол ретиналя (~183° после КМ/ММ) ближе к планарному. На этом же втором сечении обнаружен минимум DM3 (CV1~1.75Å, CV3~1.75Å), который по всем трем координатам (включая соответствующее значение CV2) фактически совпадает с областью минимумов DM1/DM2 первого сечения. Это подтверждает (согласованность) надежность идентификации конформера DCF1 через анализ разных проекций многомерной поверхности энергии. Конформеры DCF1 и DCF2 разделены барьером ~13 ккал/моль. Протонированный His57 (кислый pH): На сечении CV2, CV1 наиболее глубокий минимум PM1 (CV1~1.77Å, CV2~182°) соответствует конформеру PCF1. Он аналогичен DCF1, имея H-связь Asp85-РПШО (после КМ/ММ CV1~1.75Å, торсионный угол ~193°) и сохраняя H-связь Asp85-His57. На сечении CV1, CV3 самый глубокий минимум PM2 (CV1~1.69Å, CV3~4.19Å) соответствует конформеру PCF2. Он также имеет H-связь Asp85-РПШО (после КМ/ММ CV1~1.54Å, торсионный угол ~187°), но H-связь между Asp85 и дважды протонированным His57 разорвана (после КМ/ММ CV3~4.93Å). Минимум PM3 на этом сечении (CV1~1.74Å, CV3~1.76Å) соответствует области PM1 с первого сечения, вновь демонстрируя согласованность. Конформер PCF4 (из минимума PM4: CV1~3.23Å, CV3~4.74Å), изначально без H-связи Asp85-РПШО. Однако после оптимизации геометрии методом КМ/ММ в конформере PCF4 образуется водородная связь между Asp85 и РПШО, и в этом случае его можно считать практически идентичным PCF2 конформеру. Расчет энергий вертикальных переходов (VEE) и анализ спектральных свойств: VEE, рассчитанные методом XMCQDPT2/SA-CASSCF(12,12)/(aug)-cc-pVDZ // EFP, смещаются в длинноволновую область при удалении H-связи Asp85-РПШО или протонировании His57. Это объясняется дестабилизацией основного состояния S₀ РПШО из-за уменьшения стабилизирующего влияния отрицательного заряда Asp85. Расчетные профили электронно-колебательных спектров поглощения для различных конформеров при одном pH практически идентичны (из-за доминирования схожих высокочастотных колебаний РПШО), что объясняет трудность их различения по стационарным спектрам. Корреляция структурных данных с экспериментальной pH-зависимой кинетикой: Экспериментально (данные коллег) кинетика распада возбужденного состояния ESR имеет реакционноспособную (РS) и нереакционноспособную (НРС) компоненты, времена жизни которых растут с понижением pH. Время жизни реакционноспособного состояния составляет 0.51±0.02, 0.62±0.04 и 0.88±0.07 пс при рН 9.5, 7.4 и 5.3 соответственно. Нереакционноспособное состояние характеризуется временами жизни 5.1±0.7, 4.7±0.4 и 8.9±1.2 пс при рН 9.5, 7.4 и 5.3, соответственно. За нереакционноспособные состояния может быть ответствена гетерогенность активного центра ESR. То есть часть молекул – реакционноспособные, а часть – нереакционноспособные. Критерии реакционноспособности взяты из литературы и основаны на структурных особенностях: наличие прямой H-связи Asp85-РПШО и значительное скручивание торсионного угла C12-C13=C14-C15 РПШО способствуют фотоизомеризации. Близость отрицательного противоиона Asp85 к РПШО и его H-связь с ним изменяют распределение электронной плотности в полиеновой цепи и способствуют скручиванию вокруг двойной связи, облегчая фотоизомеризацию вокруг ключевой двойной связи. Классификация конформеров: DCF1, PCF1, PCF2 – реакционноспособные (есть H-связь Asp85-РПШО и скрученный ретиналь). DCF2 – нереакционноспособный (нет H-связи Asp85-РПШО, ретиналь более планарный). Также судя по экспериментальным данным, полученным при высоких pH, должен быть еще и гипотетический конформер PCF5 - протонированный аналог DCF2 без H-связи Asp85-РПШО, который является нереакционноспособным при низких pH и предположение о существовании которого мы используем для объяснения кинетической схемы. Предложенная кинетическая схема: pH-зависимость кинетики объясняется изменением соотношения конформеров из-за протонирования His57 (pKa по разным источникам от 6.5 до 9.1). При pH 9.5 доминирует депротонированный His57. Поэтому время РS (0.51 пс) обусловлено DCF1 и, возможно, PCF1, который структурно схож с DCF1 и может иметь близкую скорость изомеризации, но при данном pH присутствует в очень малой концентрации; НРС (5.1 пс) – от нереакционноспособного DCF2. При pH 7.4 также существует смесь рассмотренных выше форм. Небольшое увеличение времени жизни РS (0.62 пс) может быть обусловлено ростом доли PCF1, который , вероятно, немного медленнее, чем DCF1. НРС (4.7 пс) по-прежнему обусловлен DCF2. При pH 5.3 доминирует протонированный His57. Значительное увеличение времени жизни РS (0.88 пс) объясняется ростом доли конформера PCF2. Отсутствие H-связи His57-Asp85 в PCF2 может влиять на заряд Asp85 и, следовательно, на перераспределение электронной плотности в РПШО при возбуждении, замедляя фотоизомеризацию по сравнению с DCF1/PCF1. Увеличение времени жизни НРС (8.9 пс) связывается с появлением/ростом доли PCF5. Основные выводы данного отчетного периода: 1. Мутантная форма KR2 P219T/S254A обладает структурной гетерогенностью активного центра, обусловленной наличием двух конформаций остатка Thr219. 2. Разработана и теоретически подтверждена стратегия рационального дизайна для получения красного смещения в спектре родопсинов. Показано, что стабилизация возбужденного состояния (путем введения полярных групп у β-иононового кольца, мутация P219T) и дестабилизация основного состояния (путем снижения полярности окружения у основания Шиффа, мутация S254A) являются эффективными подходами. На примере мутанта KR2 P219T/S254A подтверждена ее работоспособность: расчетный красный сдвиг энергии на 0.11-0.13 эВ согласуется с экспериментальными данными. 3. Установлено влияние мутаций P219T/S254A на нелинейные свойства KR2. Сечение классического ДФП (CTPA) незначительно увеличивается, так как рост дипольного момента перехода (ДМП) компенсирует уменьшение разности постоянных дипольных моментов (ПДМ). Вероятность запутанного ДФП (ETPA), наоборот, снижается, поскольку доминирующим фактором становится уменьшение суммы ПДМ, от которой зависит неклассический вклад. 4. Подтверждена высокая эффективность и быстрая сходимость N-уровневых моделей для расчета сечения ДФП для родопсина KR2 и его мутантных форм. Вклад высоко возбужденных состояний зависит от энергии отстройки и значительно уменьшается при ее увеличении, что обусловливает применимость N-уровневых моделей, где суммирование проводится по конечному числу состояний. В результате для получения точного численного значения сечения ДФП достаточно учета лишь небольшого числа (3-4) низколежащих возбужденных состояний. 5. Доказана применимость упрощенной двухуровневой модели (TLM) для описания ДФП в родопсине KR2 и его мутантных формах. Установлено, что ее высокая точность обусловлена тем, что переход S₀→S₁ является ярким и сопровождается значительным перераспределением электронной плотности, в результате чего вклад каналов через постоянные дипольные моменты (PDP-механизм) доминирует над вкладами других промежуточных состояний. 6. Установлен эффект значительного усиления ДФП при использовании квантово-запутанных фотонов. Расчеты показали, что микроскопическая вероятность поглощения в KR2 и его мутанте на порядок (в 9-14 раз) превышает таковую для классических фотонов. Это объясняется тем, что постоянные дипольные моменты основного и возбужденного состояний в этих системах почти параллельны, что делает их сумму (от которой зависит запутанное поглощение) значительно больше их разности (от которой зависит классическое поглощение). 7. В ходе исследования с помощью метадинамики было установлено , что активный центр родопсина из эубактерии Exiguobacterium sibiricum, проявляет выраженную гетерогенность. Эта гетерогенность выражается в существовании нескольких термодинамически стабильных конформеров белка как для формы с депротонированным остатком гистидина 57, характерной для щелочных значений pH, так и для формы с протонированным остатком гистидина 57, преобладающей в кислой среде. Структуры, полученные в ходе метадинамики, были уточнены с помощью последующей оптимизации геометрии методом QM/MM. 8. Идентифицированы ключевые структурные параметры, определяющие различия между этими конформерами. К таким параметрам относятся наличие или отсутствие водородной связи между аспартатом 85 и протонированным основанием Шиффа ретиналя, наличие или отсутствие водородной связи между гистидином 57 и аспартатом 85, а также степень скручивания молекулы ретиналя вокруг связи C13=C14. Установлено, что во всем диапазоне pH есть как конформеры, ответственные за образование реакционноспособных возбужденных состояний ESR, так и есть конформеры, ответственные за образование нереакционноспособных возбужденных состояний ESR. На основании детального анализа структурных особенностей каждого конформера и с учетом данных из научной литературы, в частности, о корреляции между строением активного центра и скоростью фотоизомеризации в других родопсинах, была проведена классификация найденных конформеров по реакционной способности. Ключевыми критериями для отнесения конформеров к реакционноспособным служили наличие прямой водородной связи между первичным противоионом аспартатом 85 и протонированным основанием Шиффа ретиналя, а также значительное скручивание полиеновой цепи ретиналя вокруг связи C13=C14. Конформеры, обозначенные в работе как DCF1, PCF1 и PCF2, обладающие такими характеристиками, были отнесены к реакционноспособным, то есть способствующим эффективной фотоизомеризации ретиналя. Напротив, конформеры, такие как DCF2, где прямая водородная связь между аспартатом 85 и протонированным основанием Шиффа ретиналя отсутствовала, а полиеновая цепь ретиналя была более плоской, были классифицированы как нереакционноспособные. Это также относится к предполагаемому протонированному аналогу DCF2, конформеру PCF5, распад возбужденного состояния которых не ведет к образованию фотопродукта. 9. Расчеты энергий вертикальных электронных переходов для найденных конформеров показали смещение полосы поглощения в длинноволновую область как при удалении водородной связи между аспартатом 85 и протонированным основанием Шиффа ретиналя, так и при протонировании гистидина 57. Эти результаты согласуются с представлениями об уменьшении стабилизации основного состояния вследствие изменения электростатического окружения протонированного основания Шиффа ретиналя. Было также установлено, что профили спектров поглощения для различных конформеров, существующих при одном и том же значении pH, практически идентичны. Такое сходство форм спектров объясняется тем, что основной вклад в ширину и форму полосы поглощения вносят близкие по частоте высокочастотные валентные колебания двойных связей в молекуле протонированного основания Шиффа ретиналя, которые оказываются активными во всех этих конформерах. Это объясняет, почему данные конформеры трудно различить экспериментально на основе стационарных спектров поглощения, в то время как их кинетические характеристики, отражающие динамику первичных фотопроцессов и полученные из фемтосекундной спектроскопии, существенно различаются. 10. Предложена схема, объясняющая экспериментально наблюдаемую pH-зависимость кинетики распада возбужденного состояния родопсина ESR. Согласно этой модели, понижение pH от 9.5 до 5.3 приводит к изменению соотношения между конформерами с депротонированным и протонированным гистидином 57 . При высоких значениях pH доминирует конформер DCF1, обеспечивающий быструю реакционноспособную компоненту, и DCF2, ответственный за нереакционноспособную компоненту. По мере снижения pH и увеличения доли форм с протонированным гистидином 57, таких как PCF1 и PCF2, происходит изменение в кинетике распада возбужденного состояния. В частности, возрастание концентрации реакционноспособного конформера PCF2, который из-за отсутствия водородной связи между гистидином 57 и аспартатом 85 обладает более медленной скоростью фотоизомеризации, а также появление нереакционноспособного конформера PCF5, объясняют общее увеличение времен жизни как реакционноспособной компоненты при pH 5.3, так и нереакционноспособной компоненты при pH 5.3.

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".